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电泳迁移实验 EMSA
1 、核蛋白的提取 ①用 细 胞 刮子刮取RAW264.7 细胞与VSMC ，移入2.5mlEP 管中。②将细胞用冰冷PBS 洗两遍，于4 ℃ , 5000g
2024-11-20 54 -
双向电泳的实验相关试剂配制
1． Bradford 工作液 95%乙醇 25ml 先用乙醇溶解考马斯亮兰G250，溶解完后再加磷 85%磷
2024-11-20 55 -
SDS-PAGE凝胶电泳及蛋白印记
①10Running Buffer 将144g Glycine、30.2g Tris Base、10g SDS溶解于1L双蒸水中。 使用时稀释10倍 ②1Tra
2024-11-20 79 -
凝胶选择指导
Invitrogen提供了大量的涵盖面广的蛋白分离预制胶，包括不同的成分，百分比浓度和格式。使用合适的胶百分比浓度，缓冲系统，上样孔格式以及胶的厚度，对于获得最
2024-11-20 73 -
影响电泳的因素
不同的带电颗粒在同一电场中泳动的速度不同。常用泳动度（或迁移率）来表 示。泳动度是指带电 颗粒在单位电场强度下泳的速度。影响泳动度的主要因素有：1、首先决定
2024-11-20 66 -
蛋白质提取
蛋白质的提取工作是将经过处理或破碎的细胞，置于一定的条件和溶液中，让被提取物充分释放出来的过程。影响提取的因素主要是被提取物质在提取的溶液中溶解度的大小及由固相
2024-11-20 59 -
等 电 聚 焦
等电点聚焦就是在电泳槽中放入载体两性电解质，当通以直流电时，两性电解质即形成一个由阳极到阴极逐步增加的pH梯度，当蛋白质放进此体系时，不同的蛋白质即移动到或聚
2024-11-20 51 -
等电聚焦电泳技术
等电聚焦（isoelectric focusing，IEF）是60年代中期问世的一种利用有pH梯度的介质分离等电点不同的蛋白质的电泳技术。由于其分辨率可达0.0
2024-11-20 76 -
电泳法(三个主要的方法，步骤)
电泳 法 电泳 法是指带电荷的供试品（蛋白质、核苷酸等）在惰性支持介质（如纸、醋酸纤维素、琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶等）中，于电场的作用下，向其对应的电极方向按
2024-11-20 65 -
电泳缓冲液、染料和凝胶加样液
电泳缓冲液 50Tris-乙酸（TAE）缓冲液 成分及终浓度 配制1L溶液各成分的用量 2mol/L Tris碱 1mol/L 乙酸 100 mmol/L ED
2024-11-20 63 -
#吐槽#跑电泳
光様：今天诸事不顺啊啊啊啊啊ヽ(｀Д′#)!!!下午做PCR制样的时候老是加错东西导致我制样就花了一个小时，最后盖EP管盖子的时候直接把整个管搞翻了又得重新加=
2024-11-20 46 -
电泳缓冲液
缓冲液在电泳过程中的一个作用是维持合适的pH。电泳时正极与负极都会发生电解反应，正极发生的是氧化反应（4OH--4e->2H2O+O2)，负极发生的是还原
2024-11-20 61 -
电泳技术发展简史
简介 1809年俄国物理学家Рейсе首次发现电泳现象。他在湿粘土中插上带玻璃管的正负两个电极，加电压后发现正极玻璃管中原有的水层变混浊，即带负电荷的粘土颗粒向
2024-11-20 71 -
DNA胶回收实验技术总结
胶回收一. 提高胶回收量的办法：1) 增加电泳时的上样量。2) 电泳缓冲液用新鲜配制的。3) 切胶时尽量只切有条带的胶，减小切胶体积：含目的片断很少的胶就不要要
2024-11-20 85 -
EMSA(PROMEGA)
凝胶迁移实验 以下问题是以Promega公司试剂盒为例。 [InstallDir_ChannelDir]mob/72360.shtml 1)什么是凝胶迁移或电泳
2024-11-20 62
