动物活体光学成像-常规注射方式——皮下注射、肌肉注射、静脉注射、动脉注射

在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起的变化，常需要将药物注入动物体内。给药的途径和方法多种多样，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定。

材料与仪器

实验动物

试剂：水、碘酒、酒精、药液

仪器耗材：注射器、金属网、针头、铁丝笼、玻璃筒、橡皮带、注射针

步骤

皮下注射：常选注射部位为大腿背部、大腿内存或腋下。操作时，使用碘酒或 75% 酒精消毒注射部位。针头与皮肤平行进针，刺入约 1 厘米。针头稍微左右动一下，若能动则说明在皮下，否则可能在皮内或肌肉内。轻轻回抽，若没有回血，则可缓慢注射药物。小鼠一般注射量为 100 微升。拔针时，按压进针部位，以防药物漏出。

肌肉注射：一般注射部位为大腿外侧肌肉。注射前，将小鼠麻醉后剃除注射部位的毛发。常规消毒注射部位，针头与注射部位垂直进针，进针深度约 0.5cm，回抽针筒，若有血液回流，则需重新进针。确认插入肌肉后，缓慢注射药物，以防损伤组织和药物溢出。

尾静脉注射：大小鼠尾部左右两侧各有一条静脉，位置较浅，常作为注射部位。首先，用保定器把小鼠保定，露出其尾部。然后，用浸泡在 50℃ 左右温水的毛巾热敷尾部，使血管扩张，再用酒精擦拭。左手托起尾部，右手持针，使针头与静脉平行，从距离尾尖约 2-3cm 的位置开始进针。若注射时没有阻力，且观察到血管整条由红变白，则注射成果。

腹腔注射：腹腔注射的药物吸收速率比尾静脉注射慢，但是该注射方式的给药量要大于尾静脉注射。注射时，左手固定小鼠。翻转小鼠，使小鼠头部向下，腹部向上，呈 45° 角。由于重力作用，可使腹腔中肠道等重要器官倒向胸部，避免注射时损失脏器。于左下腹进行消毒处理，右手持注射器，以 45° 角进针，进针深度约 1cm。进针感觉明显落空感，回抽较吃力且仅有空气被吸入，则说明进针成果。最后，缓慢注射药物。

注意事项

在给动物用药时，首先根据需要选择注射器的规格和材料，注射器按容量有 5、10、20、50、100 毫升等规格, 按材料有金属、玻璃、塑料等。其次要谨慎检查注射药物的适合用途，有无变质、混浊、沉淀，如同时使用 2 种以上药液，需注意药物间的配伍禁忌。