癌细胞的分离培养和接种

问：我手上现有冻存的小鼠c26结肠癌和lewis肺癌组织块，请问怎样把癌细胞分离出来培养，然后接种到小鼠身上？

答：方法：

1、组织块——酒精浸泡——剪碎——Hank's冲洗——胰酶消化——离心——Hank's冲洗——离心——计数——转至培养瓶——37℃培养——接种。

2、组织块——酒精浸泡——剪碎——转至培养瓶——加培养液——37℃培养——接种。

具体操作步骤：

一、材料及试剂：

仪器：培养箱(调整至37℃)，培养瓶、青霉素瓶、小玻璃漏斗、平皿、吸管、移液管、纱布、手术器械、血球计数板、离心机、水浴箱(37℃)。

材料：小鼠c26结肠癌和lewis肺癌组织块。

试剂：1640培养基(含20%小牛血清)，0.25%胰酶，Hank's液，碘酒。

二、操作步骤：

(一)胰酶消化法：

1、器材：将小鼠c26结肠癌和lewis肺癌组织块置75%酒精泡2-3秒钟。

2、用Hank's液洗涤三次。

3、用手术剪将组织剪成小块(1mm2)，再用Hank's液洗三次，转移至小青霉素瓶中。

4、视组织块量加入5-6倍的0.25%胰酶液，37℃中消化20-40分钟，每隔5分钟振荡一次，或用吸管吹打一次，使细胞分离。

5、加入3-5ml培养液以终止胰酶消化作用(或加入胰酶抑制剂)。

6、静置5-10分钟，使未分散的组织块下沉，取悬液加入到离心管中。

7、1000rpm，离心10分钟，弃上清液。

8、加入Hank's液5ml，冲散细胞，再离心一次，弃上清液。

9、加入培养液l-2ml(视细胞量)，血球计数板计数。

10、将细胞调整到5×105/ml左右，转移至25ml细胞培养瓶中，37℃下培养。

上述消化分离的方法是最基本的方法，在该方法的基础上，可进一步分离不同细胞。细胞分离的方法各实验室不同，所采用的消化酶也不相同(如胶原酶，透明质酶等)。

(二)组织块直接培养法：

自上方法第3步后，将组织块转移到培养瓶，贴附与瓶底面。翻转瓶底朝上，将培养液加至瓶中，培养液勿接触组织块。入37℃静置3-5小时，轻轻翻转培养瓶，使组织浸入培养液中(勿使组织漂起)，37℃继续培养。

三、注意事项：

1、自取材开始，保持所有组织细胞处于无菌条件。细胞计数可在有菌环境中进行。

2、在超净台中，组织细胞、培养液等不能暴露过久，以免溶液蒸发。

3、凡在超净台外操作的步骤，各器皿需用盖子或橡皮塞，以防止细菌落入。

四、无菌操作的几个注意事项：

1、操作前要洗手，进入超净台后手要用75%酒精或0.2%新洁尔灭擦试。试剂等瓶口也要擦试。

2、点燃酒精灯，操作在火焰附近进行，耐热物品要经常在火焰上烧灼，金属器械烧灼时间不能太长，以免退火，并冷却后才能夹取组织，吸取过营养液的用具不能再烧灼，以免烧焦形成碳膜。

3、操作动作要准确敏捷，但又不能太快，以防空气流动，增加污染机会。

4、不能用手触已消毒器皿的工作部分，工作台面上用品要布局合理。

5、瓶子开口后要尽量保持45°斜位。

6、吸溶液的吸管等不能混用。

附：Hank's液配方：

KH2PO4 0.06g，Nacl 8.0g，NaHCO3 0.35g，KCl 0.4g，葡萄糖1.0g，Na2HPO4·H2O 0.06g，加H2O至1000ml注：Hank's液可以高压灭菌。4℃下保存。