双脱氧法DNA 测序常见问题
问题 | 可能原因 | 解决方法 |
放射自显影片空白 | DNA 聚合酶失活 标记物太旧 | 用对照引物、模板及试剂进行试验 |
试剂太旧 | 替换缺陷试剂 | |
不正确或有缺陷的引物 | ||
不正确或有缺陷的模板, | ||
曝光失误(如保留了保鲜膜,凝胶对着胶片的背面等 | 改正错误 | |
整张放射自显影片太亮/标记物掺入不足 | 标记物太旧 | 采用新标记物 |
酶活性太低 | 采用新的酶制剂,在临用前才稀释并置于冰上 | |
引物与模板复性不好 | 将引物复性温度最优化。如果选用双链模板,记住在复性前一定要碱变性 | |
引物量不够 | 用对照DNA模板和引物进行试验,检测引 物的浓度。使用单链模板时需引物0.5 pmol, 双链模板需1 pmol | |
模板量不够 | 用对照DNA 模板和引物进行试验,用凝胶 检测模板浓度,每组反应用约0.5 pmol 模板DNA | |
曝光或放射自显影失误 | 重新曝光,必要时更换显影试剂移去保鲜膜 | |
所有泳道背泉都较高 | DNA 模板不纯 | 检查对照DNA 是否存在同样的问题。如没 有,重新制备新的模板;如果是双链模板,用RNA 酶A 处理,酚抽提,乙 醇沉淀;必要时,用CsCl 提纯 DNA |
整个泳道中条带全部扩散或模糊 | DNA 模板不纯 | 检查对照DNA 是否存在同样的问题.如没 有,重新制备新的模板。如果是双链模板,用RNA 酶A 处理,酚抽提,乙醇沉淀,必要时,用CsCl 提纯DNA |
聚丙烯酰胺凝胶质量差 | 用高质量的试剂配制新的丙烯酰胺、亚甲双丙烯酰胺及缓冲液。储液保存于4℃暗处 | |
凝胶灌制后不久就使用 | 让凝胶聚合更长时间 | |
凝胶中缓冲液的浓度与电泳槽中的浓度有差异 | 从同一1OX TBE 储液出发,配制凝胶及电泳液 | |
样品煮沸过度 | 如果样品将在多块凝胶中加样.从反应混合物中分别取3 μl 小份样品加热并上样 | |
样品在电泳前未经变性 | 95’C 水浴加热样品2~3 min | |
在太高温度下进行凝胶电泳 | 用温度计监测凝胶温度,保持在65°C 以下,必要时,在稍低的电压下电泳以保持低温 | |
凝胶部分区域条带模糊 | 凝胶或凝胶上的塑料包装膜有皱纹 | 详见测序胶罐装方式 |
胶片没有与凝胶夹紧 | 在凝胶背面插入滤纸以填充X 射线片盒的多余空间,必要时,多用些夹子 | |
在凝胶450~550核苷酸处的所有条带扭曲 | 样品中含有>0.5 %甘油 | 用不含甘油的稀释液稀释DNA 聚合酶 |
整块胶所有的4 条泳道上均同时出现条带 | 酶活性低 | 用新的酶制剂,临用前才用合适的稀释液或1X 测序缓冲液稀释 |
缓冲液或核苷酸混合物有误 | 配制新的混合物试剂 | |
试剂被污染 | 配制新的试剂 | |
条带间隔失常;条带丢失两、三个泳道的同一位置上同时出现条带,但仅见于特定区域 | 压缩(在凝胶电泳条件下新合成DNA链的二级结构所致) | |
整块凝胶上均见不只一个泳道的同一位置上出现条带 | DNA 制剂中含有2 种不同的DNA 分子,这些分子产生重叠序列 | 重新从单菌落或单个噬斑中制备新的DNA |
引物复性于模板的第二位点 | 调整引物/模板的比例及复性温度 |