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DNA实验

FCM对外周白细胞的免疫荧光分析

2024-09-27 DNA实验 加入收藏
第三节 FCM对外周白细胞的免疫荧光分析外周血是临床检验中的重要标本。FCM分析外周白细胞的主要目的是了解各种白细胞的数目与分群情况。这些数字的变化与临床的某些

第三节 FCM对外周白细胞的免疫荧光分析

外周血是临床检验中的重要标本。FCM分析外周白细胞的主要目的是了解各种白细胞的数目与分群情况。这些数字的变化与临床的某些疾病有一定的关系。近年来,由于多种识别白细胞膜表面抗原的单克隆抗体的发现,以及对这些单克隆抗体的直接或间接荧光标记物的出现,使得利用FCM的荧光组织化学分析获得被测细胞的多指标的更多、更准确的信息,这无疑对警觉临床和科研有很大帮助。本节 主要讨论有关外周血的白细胞的免疫荧光标记技术、数据分析及临床应用等方面的问题。

一、白细胞的免疫荧光标记技术

1.白细胞抗原下面给出世界卫生组织对白细胞抗原的统一命名,以及它们的分子量、对应的单克隆抗体及反应阳性的细胞(见表10-2)。

表10-2 WHO对白细胞分化抗原的命名

抗原 分子量 单克隆抗体 反应阳性细胞 CD 1 P45/12 Leu 6 ,T 6 ,OKT 6 胸腺细胞、朗格罕细胞 CD 2 P50 Leu 5 B,T 11 ,OKT 11 E玫瑰花受体、T和NK细胞 CD 3 P19-29 Leu 4 ,T 3 ,OKT 8 T细胞 CD 4 P55 Leu 3 ,T 4 ,OKT 4 协助―诱导T细胞,单核细胞 CD 5 P67 Leu 1 ,T 1 , T 101 T细胞、B细胞亚群,慢粒(淋巴性) CD 6 P120 T 12 T细胞 CD 7 P41 Leu 9.3 A T,T―ALL a 和NK细胞 CD 8 P32-33 Leu 2 ,T 6 ,OKT 8 抑制-细胞毒T细胞、NK细胞 CD 9 P24 BA-2 淋巴细胞 白血病 相关抗原 CD 10 P100 CALLA, J 5 粒细胞、前B白血病细胞 CD 11 P170/95 CR 3 /Leu 15 ,OKM 1 单核细胞、粒细胞、NK细胞     MO 1 T细胞亚群(C 3 bi受体) CD 15 LNFP-I LeuM 1 单核细胞、粒细胞、激活的T细胞 CD 16 P50~70 Leu 11 NK细胞、粒细胞(IgGFc受体) CD 19 P95 Leu 12 ,B 4 B、CLL b 前B-ALL细胞 CD 20 P35 Leu 16 ,B 1 B细胞 CD 21 P140 CR 2 ,B 7 B细胞、C 3 a受体细胞 CD 22 P135 Leu 41 B、CLL、和毛细胞白血病细胞 CD 23 P45 Blast 2 CD 24 P45,P55 BA-1 B、CLL和前B-ALL细胞 CD 25 P65 IL-2受体 数分裂因子激活的T细胞HTLV-I、II、感染细胞

a:急性淋巴细胞性白血病;b:慢性淋巴细胞性白血病。

2.样品的制备供FCM分析的样品是单细胞悬液,而且大部分样品都需经荧光染色。样品的制备方法大致有三种:①用荧光单克隆抗体染全血,随后溶解红细胞;②红细胞溶解后染色;③通过梯度离心法分离出单个淋巴细胞和单核细胞,再将之制成细胞悬液染色。

(1)全血染色后溶解红细胞:由于不少血液标本具有生物危害性,用此方法可以将染色、溶解、固定、分析几个步骤都在一个试管内进行,这样减少转换过程中的污染。而且此法比用梯度离心分离出单个核细胞更节 省时间。由于此法未将粒细胞去除,故在用FCM分析时,要注意排除粒细胞的干扰。

具体操作步骤如下:

①全血100~150μl,放入5ml试管,并用50~100μl PBS稀释,总体积为200μl。]

  ②荧光标记的单克隆抗体染色30min,4 ℃ (或放于冰上)。单克隆抗体的浓度因不同来源差异很大,但为了使用方便,可按其说明书配成每次实验使用10μl。注意蔽光。

③用3~4μl冷BPS清洗。离心250×g(约每分钟1500转),5min,洗3次。注意每次用吸管将上清吸出,决不能倾倒去液!

④用2ml氯化铵液(配法见下)在室温下溶解红血球,约10min。若红细胞完全被溶解,溶液由混浊变到透明。注意溶解程度的掌握十分重要:若溶解过分,则导致白细胞上抗原被破坏,或者某些敏感的细胞死亡而导致比例的改变。若溶解不彻底,大量红细胞会影响对淋巴细胞的分析。这是因为淋巴细胞在分析图像上与红细胞群接近,在框出淋巴细胞群时,会把部分红细胞框定于淋巴细胞内。而红细胞溶解不足或过度在很大程度上影响着分析结果。

【氯化铵液的配制】

Tris―氯化铵1×氯化铵

  0.16mol/L  NH 4 Cl   0.38g/100ml   90ml   0.16mol/L  NH 4 Cl

0.17mol/L  Tris   2.06g/100ml   10ml  0.17mol/l   Tris

pH值7.56                 pH值7.2

⑤红细胞被彻底溶解,加入1ml PBS稀释的0.5%甲醛,立即离心,洗3次,条件同步骤③。加入甲醛的目的是尽早固定细胞和细胞上的抗原,避免有生物危害的标本到处污染。

  ⑥将染色完成的细胞悬浮于0.5~1ml的0.1%甲醛溶液内。置4 ℃ ,蔽光,等待分析。经固定后的细胞在冰箱内可保存一周,这样对工作的安排会带来方便。

(2)红细胞被溶解后再对白细胞染色:此方法的优点是可以了解被染白细胞的数量以及存活率。但由于有时有些标本比较敏感,溶解红细胞后,还要经过多个染色步骤,这样容易造成抗原的丧失。此法具体步骤如下:

①室温下放入14ml氯化铵在15ml的试管里。

②加入0.5~1ml全血,混合3~5min。

③立即离心100~150×g,并用PBS洗2次。

  ④白细胞计数,注意存活率应在90%以上。做成每毫升含5×10 6 白细胞悬浮液。将细胞分配到5ml的试管,每试管0.2ml,即1×10 6 个细胞。

  ⑤荧光标记的单克隆抗体染色30min,4 ℃ ,避光。抗体浓度配制如前所述。

⑥PBS洗3次后,用0.5%甲醛固定。方法如前。

(3)用Ficoll―Hypaque 梯度离心法分离出单个核细胞:用此法可以


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