转移电泳实验技术操作方法

原理：转移电泳是将经聚丙烯酰胺凝胶电泳 分离出的蛋白质谱直接转移到硝酸纤维膜上，而形成固定相，并同时排除各种干扰物质，保持其天然构象和生物学活性，完成在凝胶中难以进行的各种生物试验。

材料

1.琼脂 糖

2.丙烯酰胺

3.甲叉双丙烯酰胺

4.十二烷基磺酸钠(SDS)

5.硝酸纤维膜滤纸 孔径0.45μm

6.琼脂糖凝胶电泳缓冲液 0.89mMol/L Tris—89mmol/L 硼酸—2.5mMol/L EDTA (pH8.3)。

7.SDS—聚丙烯酰胺凝胶电泳缓冲液 0.05Mol/L Tris—0.384Mol/L 甘氨酸—0.1%SDS(pH8.3)。

8.蛋白质转移电泳缓冲液 25mMol/L Tris—192mMol/L 甘氨酸—20%甲醇(pH8.3)。

9.溴乙啶溶液 称取5mg溴乙啶，用无离子水溶解。定容到10ml，取1ml稀释到1 000ml，最终浓度为0.5μg/ml。10.考马斯亮兰R-250染色液 0.25%考马斯亮兰R-250-10%醋酸-45%甲醇。

11.氨基黑染色液 在含10%醋酸的甲醇中加入氨基黑10B至饱和。

12.垂直板型及水平板型凝胶电泳槽

13.转移电泳槽

14.直流稳压电源0V~800V，0mA~100mA

操作方法

1.SDS—聚丙稀酰胺凝胶电泳(垂直板型)分离蛋白质。

⑴凝胶的制备：丙烯酰胺 15.00g ;甲叉双丙烯酰胺 0.40g ;0.37Mol/L Tris—HCl(pH8.3)50ml ，此为丙烯酰胺母液，过滤后4℃保存备用。丙烯酰胺母液 8.30ml ;N、N、N、N—四甲基乙二胺(DEMED)250μl ;10%SDS 0.25ml ;0.375Mol/L pH8.8 Tris-HCl16.45ml 混合即为10%分离胶。

丙烯酰胺母液 1.30ml;TEMED 15.00μl ;10%SDS 0.10ml ;0.125Mol/L pH6.8Tris-HCl8.60ml 制成4%浓缩胶。

将分离胶与浓缩胶真空抽气10min~15min，备用。

⑵凝胶板的制备及加样：取1%的琼脂将凝胶膜底部的缝隙封固。在10%的分离胶中加入10%过硫酸铵0.25ml，混匀后，立即沿玻璃壁缓缓加入胶膜中，上端留出5cm的高度，然后用带有细针头的注射器轻轻地向胶面加入蒸馏水，静置数分钟，水胶界面消失，约20min～30min界面清晰(凝胶已聚合)，用注射器将水吸出，并用滤纸吸干余水。在4%浓缩胶中加入10%过硫酸铵0.4ml，混匀后，沿玻璃壁缓慢倒入已聚合的分离胶的上面，立即插进样品槽模板。待凝胶聚合后(约20min～30min)，轻轻拔出样品槽模板。将电泳缓冲液加入上、下电泳槽。将分离的蛋白质样品用0.01Mol/L Tris-HCl(pH8.0)-0.001Mol/L EDTA-1%SDS-5%硫基乙醇溶液作1︰1稀释，100℃加热处理3min之后，加入甘油10%及适当量溴酚兰，用微量注射器将样品注入样品槽中，蛋白质最后浓度一般为0.05mg/ml～1mg/ml。

⑶电泳：上端接阴极，下端接阳极。电压120V、电流30mA，电泳时间5h~6h，待染料泳至距底部约1cm处时断电。

⑷染色：切下一部分凝胶，用考马斯亮兰R-250染色作为对照。其余部分作转移电泳。