蛋白质凝胶电泳的操作方法

【材料与试剂】

（1）2×SDS凝胶加样缓冲液

（2）聚丙烯酰胺凝胶电泳槽和电泳仪

（3）加样器和吸头等

（4）水浴锅

【操作方法】

（1） 把上述处理的样品按1:1（V/V）与2×SDS凝胶加样缓冲液混合，100℃加热3分钟，使蛋白质变性；

（2） 取出变性蛋白质，立即放于冰上。样品如粘稠可进行超声对DNA进行剪切，以最大功率处理0.5～2分钟应能有效地将裂解液粘稠度降至可控水平（注意：此步骤一定要在冰上进行）；

（3） 如有沉淀以10 000g将样本4℃离心10分钟，将上清液移至另一管中，弃去沉淀物；

（4） 计算使用Western印迹法检测靶蛋白所需要的样本量，一般Western印迹法技术检测中等大小蛋白的检出下限约为1～5ng。在厚0.75mm的SDS聚丙烯酰胺凝胶上，每个泳道可加样100μg而不致过多；

（5） 用玻璃微量进样器按顺序加样，注意沿加样孔底上样，否则样品容易漂走。加样量不宜过多或过少，一般15～20ul为宜。没上样的加样孔中加1?SDS凝胶加样缓冲液；

（6） 用注射器排除两玻璃板底部的气泡，将电泳装置接通电源（正极接下槽，负极接上槽），凝胶上所加电压为8v/cm,当溴酚蓝前沿进入分离胶后，电压可提高到15V/cm,继续电泳直至溴酚蓝到达分离胶底部（约4小时），关闭电源；

（7） 从电泳装置上卸下玻璃板，放入一瓷盘中，用一注射器吸取若干毫升电泳缓冲液，将针头插入一玻璃板与凝胶之间，小心不要将凝胶刺破，沿玻璃板从左至右注入电泳缓冲液，将玻璃板与凝胶分开。靠近左边切去一角以标明凝胶的位置；

（8） 如不需做免疫检测可直接用考马斯亮蓝染色。