Native-PAGE常见问题及其解析锦集

1. 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 时预电泳是怎么回事的?预电泳时要加6×DNA上样缓冲液吗?电泳1-2小时再加结合反应产物吗?

预电泳是除去凝胶中没有聚合的单体和双体和聚合引发剂，提高分辨率，不加任何物质，一般30-60分钟后加样电泳。

2. 银染的步骤是什么?银染的关键因素是什么?

步骤是：

(1) 固定：10%冰乙酸30min。

(2) 清洗：双蒸水冲洗凝胶2次，每次1min。

(3) 染色：染色液(1g硝酸银，1.5ml 37%甲醛，1l 双蒸水。现配)染色30min。

(4) 清洗：迅速洗凝胶1次。

(5) 显影：30g碳酸钠，1.5ml 37%甲醛，200μl 10mg/l 硫代硫酸钠。显影至清晰带纹出现。

成功银染的关键因素包括：

(1) 用超纯水(比如，NANOpure或Milli-Q纯化)或者是双蒸水作银染。

(2) 用提供的碳酸钠或者ACS试剂级的碳酸钠。

(3) 在染色后，水清洗所用时间的长短很重要，用不超过5-10秒的时间清洗胶，然后放入显色溶液中，一般在水里浸一下就好。

(4) 甲醛和硫代硫酸钠(400μl/1ml)在使用前，及时加入到显色液中。

(5) 在使用前及时配染色液。

3. 变性PAGE的上样缓冲液配方?如何准备上样的蛋白?是将细胞用超声破碎,还是用细胞裂解液,大多细胞裂解液中均含有SDS,不知有没有用于非变性PAGE的裂解液.具有操作步骤是什么?

非变性的PAGE buffer就是0.5xTBE,上样缓冲液可以用普通的loading buffer，含有Tris,溴芬兰以及甘油即可，甘油是主要的沉淀作用成分。都可以自己配。细胞超声即可，超声后离心取上清.也有配NATIVE-PAGE gel所用buffer为1*TBE,用的running buffer也是1*TBE。还有一点就是要在配gel时考虑能使蛋白多聚体稳定的因素。

4. 做了naive---PAGE没有条带，蛋白质是纯品，分子 量很大，怎么回事呢?

因为分子量很大，8%的胶浓度较合适。加样时加个marker，可以检测胶制备是否有问题。银染方法比较灵敏，如果蛋白是一种酶，且可使某种底物显色的话，可以用活性染色试试，更灵敏。