溶菌酶的相对分子质量测定方法

分子量测定的实验方法与强兵利器

一、实验目的和内容

目的：1. 通过本次实验的学习与操作，使学生在实验过程更好的理解SDS-聚丙烯酰胺 凝胶(PAGE)测定蛋白质纯度与分子量的原理与依据;

2. 要求学生掌握电泳原理以及SDS-Page 垂直板电泳分离蛋白质技术;

3. 熟悉垂直板电泳操作原理和方法，凝胶染色与脱色方法，凝胶图谱的绘制与计算;

4. 了解在电泳中分子 量标准物的使用。

内容：1.SDS-PAGE电泳的原理：SDS使蛋白质的变性作用，以及此实验中采用的使不连续PAGE胶(分离胶和浓缩胶)的原理;

2.SDS-PAGE电泳进行纯度鉴定的原理：凝胶浓度(T)的选择与被分离物质分子量密切相关;

3.电泳的操作：制胶、加样、电泳、拨胶、凝胶染色与脱色;

4.蛋白条带的观察以及分子量的估算。

二、实验仪器与试剂

1.实验仪器

SDS-PAGE电泳设备，电炉，脱色摇床

2. 实验材料及试剂

实验材料：蛋清(S1)、粗分离样品(S2)、离子交换层析中穿透峰下降段样品(S3)、离子交换层析洗脱峰样品(S4)，橡胶手套

实验试剂：2×上样缓冲液、10%SDS、30%丙烯酰胺贮存液、分离胶缓冲液(1.5 mol/LpH8.8 Tris-HCl 缓冲液)、浓缩胶缓冲液(0.5 mol/LpH6.8 Tris-HCl 缓冲液)、10%过硫酸铵(AP)、TEMED、pH8.3 Tris-Gly电泳缓冲液、1%琼脂糖溶液、染色液、脱色液

三、实验步骤

(一)蛋白样品的处理

取200µL 上述备用蛋白样品于带塞的小离心管中，加入200µL 的2×上样缓冲液，混匀，轻轻盖上盖子，封口膜封紧瓶口以免加热时迸出，在100℃沸水浴中加热3～5min，取出后10000r/min 离心10min，取上清待用。

(二)SDS-PADE实验步骤(适用于大板，若为天能公司的小板，参考附录中的方法)

1.电泳玻璃板洗净，并把玻璃板在灌胶支架上固定好。( 试样格(梳子)临用前用无水乙醇擦拭，让其挥发至干。)

2.用电泳缓冲液配制1%的琼脂糖凝胶，煮沸溶解后冷却至55℃左右，加入制板槽槽内封板。(固定玻璃板时，两边用力一定要均匀，防止夹坏玻璃板.)

3.按比例配好分离胶，用移液管快速加入，大约5cm左右，之后加少许蒸馏水，静置30分钟。(凝胶配制过程要迅速, 催化剂TEMED要在注胶前再加入,否则凝结无法注胶.注胶过程最好一次性完成,避免产生气泡。水封的目的是为了使分离胶上延平直，并排除气泡。凝胶聚合好的标志是胶与水层之间形成清晰的界面。)

4.倒出水并用滤纸把剩余的水分吸干，按比例配好浓缩胶,连续平稳加入浓缩胶至离边缘5mm处，迅速插入样梳，静置25分钟。(样梳需一次平稳插入,梳口处不得有气泡,梳底需水平。)

5.拔出样梳后，在上槽内加入缓冲液，没过锯齿时可拆去底端的琼脂糖。(要使锯齿孔内的气泡全部排出,否则会影响加样效果.)

6.加样5个，空出第一个孔，从第二个开始按已编排好的顺序依次加入相应体积的样品和蛋白Marker。其中蛋清(S1)和Marker加样量为2µL，S1、S2、S3、和S4加样量为10µL。为了练习和比较上样量的影响，可以加20µL的S1～S4作为对照(注射器不可过低,以防刺破胶体,也不可过高,在样下沉时会发生扩散。为避免边缘效应，最好选用中部的孔注样。)

7.电泳槽中加入缓冲液，接通电源，进行电泳，开始电压恒定在160V，当进入分离胶后改为240V，溴酚蓝距凝胶边缘约5mm时，停止电泳。

8.凝胶板剥离与染色：电泳结束后，用专用工具撬开短玻璃板，从凝胶板上切下一角作为加样标记，然后放在大培养皿内，加入染色液，42℃染色40min左右。(剥胶时要小心,保持胶完好无损,染色要充分。)

9.脱色：染色后的凝胶板用蒸馏水漂洗数次，再用脱色液脱色，直到蛋白质区带清晰。

10.将凝胶室温保存于10%甘油水溶液中，至凝胶扫描分析。

11.凝胶扫描仪扫描并进行数据分析,求出溶菌酶的相对分子质量。分析各样品中溶菌酶相对含量的变化。

附表1

附表2

汇总所有实验结果，完成下表：

其中：总活力=比活力×体积

回收率=回收的样品活力占总活力的百分数

提纯倍数=提纯的比活力与初始比活力的比值