重组M13噬菌体克隆分析
原理在本方案中,当外源 DNA 大于 200~300 个核苷酸时,用重组 M13 噬菌体克隆感染细菌后释放至周围培养基中的单链 DNA 进行凝胶电泳分析即可鉴定
原理
在本方案中,当外源 DNA 大于 200~300 个核苷酸时,用重组 M13 噬菌体克隆感染细菌后释放至周围培养基中的单链 DNA 进行凝胶电泳分析即可鉴定。
材料与仪器
重组 M13 噬菌体单链 DNA M13 噬菌体重组噬菌斑 M13 噬菌体非重组载体噬菌斑 大肠杆菌 F' 菌株
SDS SSC 蔗糖凝胶加样缓冲液
琼脂糖凝胶 水浴
SDS SSC 蔗糖凝胶加样缓冲液
琼脂糖凝胶 水浴
步骤
一、材料
1. 缓冲液和溶液
SDS ( 2%, m/V)
20 X SSC
蔗糖凝胶加样缓冲液
2. 凝胶
琼脂糖凝胶(0.7%)悬于 0.5 X TBE, 含 0.5 μg/ml 溴化乙锭
3. 核酸和寡核苷酸
重组 M13 噬菌体单链 DNA
4. 专用设备
水浴,调至 65℃
5. 载体和菌株
在上层琼脂糖中的 M13 噬菌体重组噬菌斑
在上层琼脂糖中,分离良好的 M13 噬菌体非重组载体噬菌斑
大肠杆菌 F' 菌株
二、方法
1. 取单个噬菌斑,按方案“M13 噬菌体液体培养”的方法,在适当 F' 宿主中生长,制备推定的重组噬菌体的原种。
2. 用带有无菌吸头的微量移液器从每个上清中各取 20 μl 至一新微量离心管,剩余上清 4℃ 保存,备用。
3. 在每个 20 μl 上清中各加入 1 μl 2% SDS, 轻拍管壁混合内容物,65℃ 温育 5 min。
4. 在各管中加入 5 μl 蔗糖加样缓冲液,再轻拍混合内容物,用 0.7% 琼脂糖凝胶电泳分析,在 5 V/cm 条件下电泳,用已鉴定的带有已知大小外源序列的 M13 重组体单链 DNA 作为阳性对照。
5. 溴酚蓝迁移至胶末端后,在紫外线下照相。
6. 比较推定重组体释放的单链 DNA 与那些作为对照的非重组噬菌体释放的 DNA 的电泳迁移率。
7. 如果需要,可将凝胶上的单链 DNA 转移至硝酸纤维素膜或尼龙膜,并用适当的放射性标记探针杂交,以确证外源 DNA 的存在。凝胶先用 10 倍体积的 20 X SSC 浸泡 45 min, 然后直接将 DNA 转移至膜上。
1. 缓冲液和溶液
SDS ( 2%, m/V)
20 X SSC
蔗糖凝胶加样缓冲液
2. 凝胶
琼脂糖凝胶(0.7%)悬于 0.5 X TBE, 含 0.5 μg/ml 溴化乙锭
3. 核酸和寡核苷酸
重组 M13 噬菌体单链 DNA
4. 专用设备
水浴,调至 65℃
5. 载体和菌株
在上层琼脂糖中的 M13 噬菌体重组噬菌斑
在上层琼脂糖中,分离良好的 M13 噬菌体非重组载体噬菌斑
大肠杆菌 F' 菌株
二、方法
1. 取单个噬菌斑,按方案“M13 噬菌体液体培养”的方法,在适当 F' 宿主中生长,制备推定的重组噬菌体的原种。
2. 用带有无菌吸头的微量移液器从每个上清中各取 20 μl 至一新微量离心管,剩余上清 4℃ 保存,备用。
3. 在每个 20 μl 上清中各加入 1 μl 2% SDS, 轻拍管壁混合内容物,65℃ 温育 5 min。
4. 在各管中加入 5 μl 蔗糖加样缓冲液,再轻拍混合内容物,用 0.7% 琼脂糖凝胶电泳分析,在 5 V/cm 条件下电泳,用已鉴定的带有已知大小外源序列的 M13 重组体单链 DNA 作为阳性对照。
5. 溴酚蓝迁移至胶末端后,在紫外线下照相。
6. 比较推定重组体释放的单链 DNA 与那些作为对照的非重组噬菌体释放的 DNA 的电泳迁移率。
7. 如果需要,可将凝胶上的单链 DNA 转移至硝酸纤维素膜或尼龙膜,并用适当的放射性标记探针杂交,以确证外源 DNA 的存在。凝胶先用 10 倍体积的 20 X SSC 浸泡 45 min, 然后直接将 DNA 转移至膜上。