RT-PCR技术
原理
提取组织或细胞中的总 RNA,以其中的 mRNA 作为模板,采用 Oligo(dT)或随机引物利用逆转录酶反转录成 cDNA,再以 cDNA 为模板进行 PCR 扩增,从而获得目的基因或检测基因表达。
材料与仪器
仪器:电泳仪、凝胶图像分析系统、移液枪、离心机、水浴锅;
试剂:RNA 提取试剂、 dNTP 混合物、Taq DNA 聚合酶、第一链 cDNA 合成试剂盒、DEPC H2O、Oligo(dT);
耗材:组织、细胞、离心管、PCR 管、移液管、离心管盒。
步骤
一、总 RNA 的提取
见 总 RNA 的提取 相关内容。
二、cDNA 第一链的合成
目前试剂公司有多种 cDNA 第一链试剂盒出售,其原理基本相同,但操作步骤不一。现以 GIBICOL 公司提供的 SuperScriptTM Preamplification System for First Strand cDNA Synthesis 试剂盒为例。
1.在 0.5 ml 微量离心管中,加入总 RNA 1-5 ug,补充适量的 DEPC H2O 使总体积达 11 ul。在管中加 10 uM Oligo(dT)12-18 1 ul,轻轻混匀、离心;
2.70 ℃ 加热 10 min,立即将微量离心管插入冰浴中至少 1 min;
3.取 0.5 ml PCR 管,依次加入下列试剂:
第一链 cDNA 2 ul;
上游引物(10 pM)2 ul;
下游引物(10 pM)2 ul;
dNTP(2 mM)4 ul;
10x PCR buffer 5 ul;
Taq 酶(2 u/ul)1 ul。
轻轻混匀,离心。42 ℃ 孵育 2~5 min;
4.加入 SuperscriptⅡ 1 ul ,在 42 ℃ 水浴中孵育 50 min;
5.于 70 ℃ 加热 15 min 以终止反应;
6.将管插入冰中,加入 RNase H 1 μl,37 ℃ 孵育 20 min,降解残留的RNA。-20 ℃ 保存备用。
三、PCR
1.取 0.5 ml PCR 管,依次加入下列试剂:
第一链 cDNA 2 ul;
上游引物(10 pM)2 ul;
下游引物(10 pM)2 ul;
dNTP(2 mM)4 ul;
10x PCR buffer 5 ul;
Taq 酶(2 u/ul)1 ul;
2.加入适量的 ddH2O,使总体积达 50 ul。轻轻混匀,离心;
3.设定 PCR 程序。在适当的温度参数下扩增 28~32 个循环。为了保证实验结果的可靠与准确,可在 PCR 扩增目的基因时,加入一对内参(如 G3PD)的特异性引物,同时扩增内参 DNA,作为对照;
4.电泳鉴定:行琼脂糖凝胶电泳,紫外灯下观察结果;
5.密度扫描、结果分析:采用凝胶图像分析系统,对电泳条带进行密度扫描。
注意事项
1.在实验过程中要防止 RNA 的降解,保持 RNA 的完整性。在总 RNA 的提取过程中,注意避免 mRNA 的断裂;
2.为了防止非特异性扩增,必须设阴性对照;
3.内参的设定:主要为了用于靶 RNA 的定量。常用的内参有 G3PD(甘油醛-3-磷酸脱氢酶)、β-Actin(β-肌动蛋白)等。其目的在于避免 RNA 定量误差、加样误差以及各 PCR 反应体系中扩增效率不均一各孔间的温度差等所造成的误差;
4.PCR 不能进入平台期,出现平台效应与所扩增的目的基因的长度、序列、二级结构以及目标 DNA 起始的数量有关。故对于每一个目标序列出现平台效应的循环数,均应通过单独实验来确定;
5.防止 DNA 的污染:采用 DNA 酶处理 RNA;在可能的情况下,将 PCR 引物置于基因的不同外显子,以消除基因和 mRNA 的共线性。
常见问题
1.反转录酶的选择
(1)Money 鼠白血病病毒(MMLV)反转录酶:有强的聚合酶活性,RNA 酶 H 活性相对较弱。最适作用温度为 37 ℃;
(2)禽成髓细胞瘤病毒(AMV)反转录酶:有强的聚合酶活性和 RNA 酶 H 活性。最适作用温度为 42 ℃;
(3)Thermus thermophilus、Thermus flavus 等嗜热微生物的热稳定性反转录酶:在 Mn2+ 存在下,允许高温反转录 RNA,以消除 RNA 模板的二级结构;
(4)MMLV 反转录酶的 RNase H-突变体:商品名为 Superscript 和 SuperScriptⅡ。此种酶较其它酶能多将更大部分的 RNA 转换成 cDNA,这一特性允许从含二级结构的、低温反转录很困难的 mRNA 模板合成较长 cDNA。
2.合成 cDNA 引物的选择
(1)随机六聚体引物:当特定 mRNA 由于含有使反转录酶终止的序列而难于拷贝其全长序列时,可采用随机六聚体引物这一不特异的引物来拷贝全长 mRNA。用此种方法时,体系中所有 RNA 分子全部充当了 cDNA 第一链模板,PCR 引物在扩增过程中赋予所需要的特异性。通常用此引物合成的 cDNA 中 96% 来源于 rRNA。
(2)Oligo(dT):是一种对 mRNA 特异的方法。因绝大多数真核细胞 mRNA 具有 3' 端 Poly(A+)尾,此引物与其配对,仅 mRNA 可被转录。由于 Poly(A+)RNA 仅占总 RNA 的 1~4%,故此种引物合成的 cDNA 比随机六聚体作为引物和得到的 cDNA 在数量和复杂性方面均要小。
(3)特异性引物:最特异的引发方法是用含目标 RNA 的互补序列的寡核苷酸作为引物,若 PCR 反应用二种特异性引物,第一条链的合成可由与 mRNA 3' 端最靠近的配对引物起始。用此类引物仅产生所需要的 cDNA,导致更为特异的 PCR 扩增。
相关文章
- 采用 qRT-PCR 检测细胞炎性因子
- RT-PCR Analysis--详细的RT-PCR方法
- RT-PCR: The Basics
- RT-PCR --- one-step
- is cDNA concentration 200 ng/ul too high for qRT-PCR-Rea
- Small amounts of RNA for qRT-PCR-Real-Time PCR
- Which housekeeping genes for qRT-PCR control-Real-Time
- RT-PCR简介
- Protocol for mRNA amplification--RT-PCR实验过程
- PCR与RT-PCR技术