用离子交换层析法从DNA中去除溴化乙锭实验
原理经过氯化铯梯度离心所纯化的 DNA 中的溴化乙锭可以通过离子交换层析法去除，随后则用乙醇沉淀去除氯化铯。材料与仪器DNA 样品乙醇 HCl NaCl 酚 氯
原理
经过氯化铯梯度离心所纯化的 DNA 中的溴化乙锭可以通过离子交换层析法去除，随后则用乙醇沉淀去除氯化铯。
材料与仪器
DNA 样品
乙醇 HCl NaCl 酚 氯仿 TE TEN 缓冲液
Dowex AG50W-X8
乙醇 HCl NaCl 酚 氯仿 TE TEN 缓冲液
Dowex AG50W-X8
步骤
一、材料
1. 缓冲液和溶液
乙醇，HCl (1 mol/L) ，NaCl ( 5 mol/L)，酚，酚：氯仿（1:1，V/V) ，TE ( pH 8.0)，TEN 缓冲液，含 0.2% 叠氮钠的 TEN 缓冲液。
2. 核酸和寡核苷酸
经过氯化铯梯度离心纯化的 DNA 样品。
3. 离心机和转子
Sorvall SS-34 转子或相当产品
4. 专用设备
Dowex AG50W-X8 ( 100~200 目，干燥尺寸）（Dowex AG50W-X8 为一种阳离子交换树脂，可从 BioRad 公司获得。），玻璃棉，折光仪（可选）（尽管并非必需，但在估计氯化铯溶液密度时折光仪十分有用。）。
二、方法
1. 使用前，平衡 Dowex AG50 树脂：
(1) 将约 20 g Dowex AG50 树脂溶于约 100 ml 的 1 moI/L NaCI 中，搅拌 5 min。待树脂下沉后，吸出上清弃去。
(2) 加入约 100 ml 的 1 mol/L HCl 继续搅拌悬浮液 5 min。树脂下沉后，吸出上清弃去。
(3) 用水继续重复此步骤两次（每次 100 ml )，再用 100 ml TEN 缓冲液洗一次。
(4) 于 4℃ 将树脂贮存于含 0.2% 叠氮钠的 TEN 缓冲液中。
2. 如图所示，在巴斯德吸管中装成一个 1 ml 的 Dowex AG50 小柱。
3. 去掉树脂上的缓冲液，用 2 倍体积的 TE ( pH 8.0 ) 洗柱，再将含溴化乙锭和氯化铯的 DNA 直接加到树脂上。
4. 立即开始收集层析柱的流出液。当所有的 DNA 溶液进入柱子后，用 1.2 倍柱床体积的 TE ( pH 8.0 ) 洗脱树脂，继续收集流出液于 30 ml Corex 管中。
5. 层析柱流干以后，用 2.5 倍体积的水稀释流出液。
6. 加入 8 倍体积的乙醇，于 4℃ 置 15 min 使 DNA 沉淀。然后于 4℃ 以 17000 g ( 12000 r/min，Sorvall SS-34 转子）离心 15 min 收集 DNA。
7. 将上清倒入一个洁净的离心管，加入等体积的无水乙醇。4℃ 静置至少 15 min，然后以 20000 g ( 13000 r/min，Sorvall SS-34 转子）离心 15 min 收集 DNA。
如果第一次沉淀不能因收所有的质粒 DNA，则再加一次乙醇（Hildeman and Muller 1997）。
8. 用 70% 的乙醇洗涤上述两次所得的 DNA 沉淀，然后尽可能去除所加的 70% 的乙醇， 并让残留液体于室温下挥发。
9. 用 2 ml H2O 或 TE ( pH 8.0 ) 溶解 DNA 沉淀。
若用于 DNA 测序，DNA 应溶于 H2O 中；若 DNA 需长期保存，TE ( pH 8.0 ) 是更好的选择。
10. 若此重溶后的 DNA 从其颜色或当在紫外线照射时发出的荧光判断还明显含有溴化乙锭，则再次用酚或酚：氯仿抽提一次，然后再用乙醇沉淀 DNA。
11. 测定 DNA 终溶液的 OD260 值，计算 DNA 的浓度。分装成小份贮存于 -20℃。
1. 缓冲液和溶液
乙醇，HCl (1 mol/L) ，NaCl ( 5 mol/L)，酚，酚：氯仿（1:1，V/V) ，TE ( pH 8.0)，TEN 缓冲液，含 0.2% 叠氮钠的 TEN 缓冲液。
2. 核酸和寡核苷酸
经过氯化铯梯度离心纯化的 DNA 样品。
3. 离心机和转子
Sorvall SS-34 转子或相当产品
4. 专用设备
Dowex AG50W-X8 ( 100~200 目，干燥尺寸）（Dowex AG50W-X8 为一种阳离子交换树脂，可从 BioRad 公司获得。），玻璃棉，折光仪（可选）（尽管并非必需，但在估计氯化铯溶液密度时折光仪十分有用。）。
二、方法
1. 使用前，平衡 Dowex AG50 树脂：
(1) 将约 20 g Dowex AG50 树脂溶于约 100 ml 的 1 moI/L NaCI 中，搅拌 5 min。待树脂下沉后，吸出上清弃去。
(2) 加入约 100 ml 的 1 mol/L HCl 继续搅拌悬浮液 5 min。树脂下沉后，吸出上清弃去。
(3) 用水继续重复此步骤两次（每次 100 ml )，再用 100 ml TEN 缓冲液洗一次。
(4) 于 4℃ 将树脂贮存于含 0.2% 叠氮钠的 TEN 缓冲液中。
2. 如图所示，在巴斯德吸管中装成一个 1 ml 的 Dowex AG50 小柱。
3. 去掉树脂上的缓冲液，用 2 倍体积的 TE ( pH 8.0 ) 洗柱，再将含溴化乙锭和氯化铯的 DNA 直接加到树脂上。
4. 立即开始收集层析柱的流出液。当所有的 DNA 溶液进入柱子后，用 1.2 倍柱床体积的 TE ( pH 8.0 ) 洗脱树脂，继续收集流出液于 30 ml Corex 管中。
5. 层析柱流干以后，用 2.5 倍体积的水稀释流出液。
6. 加入 8 倍体积的乙醇，于 4℃ 置 15 min 使 DNA 沉淀。然后于 4℃ 以 17000 g ( 12000 r/min，Sorvall SS-34 转子）离心 15 min 收集 DNA。
7. 将上清倒入一个洁净的离心管，加入等体积的无水乙醇。4℃ 静置至少 15 min，然后以 20000 g ( 13000 r/min，Sorvall SS-34 转子）离心 15 min 收集 DNA。
如果第一次沉淀不能因收所有的质粒 DNA，则再加一次乙醇（Hildeman and Muller 1997）。
8. 用 70% 的乙醇洗涤上述两次所得的 DNA 沉淀，然后尽可能去除所加的 70% 的乙醇， 并让残留液体于室温下挥发。
9. 用 2 ml H2O 或 TE ( pH 8.0 ) 溶解 DNA 沉淀。
若用于 DNA 测序，DNA 应溶于 H2O 中；若 DNA 需长期保存，TE ( pH 8.0 ) 是更好的选择。
10. 若此重溶后的 DNA 从其颜色或当在紫外线照射时发出的荧光判断还明显含有溴化乙锭，则再次用酚或酚：氯仿抽提一次，然后再用乙醇沉淀 DNA。
11. 测定 DNA 终溶液的 OD260 值，计算 DNA 的浓度。分装成小份贮存于 -20℃。
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