实时荧光定量 PCR-FP
一、简介
实时荧光定量 PCR-FP
二、原理
带荧光标记的寡核苷酸探针分子小,偏振光弱。当探针与 DNA 上的特异片段结合后分子量增大,偏振光增强。在 PCR 扩增时,随着引物介导的新链形成,探针从模板上解离下来,重新成为游离状态,偏振光又减弱。
在每一个 PCR 循环退火阶段,探针又可与 DNA 链重新配对,偏振光增强。在此阶段检测偏振光的增值,可对其进行定量检测。而当所扩增的核酸序列中不含与探针相配对的特定 DNA 片段时,荧光探针无法与核酸序列配对,其荧光偏振值很弱。故可检测扩增核苷酸序列中是否含有目的 DNA 片段。
三、用途
通过荧光强度和标准品浓度制作工作曲线,检测目的基因、对目的基因进行定量。
四、材料与仪器
MJ Research V2.0;Victor Ⅱ荧光偏振检测仪;dNTPs、Taq DNA 聚合酶、血清标本、引物和探针。
五、步骤
1、血清处理:在 30 μl 血清标本中加 30 μl 处理液(10 mmol/L Tris-HCl、pH 8.0 1 mmol/L EDTA、1 ml/L NP40)于离心管中煮沸 15 min,7 000 r/min 离心 5 min。吸取上清液 2 μl 作模板。
2、PCR 扩增反应和液相杂交: 取 2 μl 模板加到 28 μl PCR 反应液中(10×PCR 缓冲液 3 μl,dNTPs 各 160 μmol/L,上游通用引物 C1 和下游通用引物 C2 各 3 pmol,探针 1.5 pmol,Taq DNA 聚合酶 1 U)。PCR 程序:94 ℃、2 min 后进入循环,94 ℃、5 s,60 ℃、55 s,72 ℃、45 s,循环 25 次,最后 94 ℃、5 s,45 ℃、20 s。
3、探针杂交:取 10 μl 杂交后的 PCR 产物加入含有 45 μl 杂交液(其中含 1 g/L 聚乙二醇 4 000,300 ml/L DMSO,6×SSC(pH10),0.01 mol/L 磷酸钠(pH 8.0),1 mmol/L EDTA(pH8.0),5 g/L SDS,100 μg/ml 变性鲑鱼精 DNA,5 g/L 脱脂奶粉)的用于荧光偏振检测的微孔中,混匀后 40 ℃ 水浴放置 10 min,然后用 Victor Ⅱ 荧光偏振检测仪检测荧光素 R110 的偏振值。
4、判定标准计算: 本实验方案以检测 HBV DNA 血清样本为例,随机选 10 份 HBV DNA 阴性血清和 10 份 HBV DNA 阳性血清进行检测,cut off 值=阴性样本结果的平均偏振光值+10%×阳性样本结果的平均偏振光值。偏振光值>cut off 值×110% 的样本为阳性,<cut off 值×90% 的样本为阴性, 而在 2 个界限内(包括界限值)的样本为+/-。判断标准为:cut off=60 mp,那么阴阳性判断标准为 54 和 66 mp。
六、注意事项
1、在 FP 检测中,被标记分子的大小是有限制的,对于特定的荧光团,增加分子量会降低潜在的检测窗口;
2、被标记分子的可允许大小也取决于标记的荧光寿命;
3、荧光标记分子大小<1.5 kD 最佳。