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PCR技术

微卫星PCR在动物分类和进化中的应用

2024-05-14 PCR技术 加入收藏
简介微卫星 PCR 是对由 2〜6 个碱基重复排列而形成的微卫星 DNA,利用保守序列设计引物进行 PCR 扩增,因重复单位数目的差异而呈现多态性。原理微卫星

简介

微卫星 PCR 是对由 2〜6 个碱基重复排列而形成的微卫星 DNA,利用保守序列设计引物进行 PCR 扩增,因重复单位数目的差异而呈现多态性。

原理

微卫星 PCR 在动物分类和进化中的应用的基本原理是利用微卫星 DNA 研究动物遗传特性的主要过程是:选取该物种的微卫星位点;设计引物进行 PCR 扩增,分析扩增结果,筛选出其中扩增效率高、多态性良好、适于遗传检测的微卫星位点,分析该品系动物的遗传特性。

其中获得微卫星位点的方法主要有两种:一是数据库法,这是最方便、经济的方法。可以从已经发表的文献或公共的 DNA 序列数据库,如 GenBank、Europe Molecular Biology Laboratory(EMBL)、DNA Data Bank of Japan(DDBJ) 中查找所要研究物种的微卫星位点和引物, 另外基因组表达序列标签 (expressed sequence tags,EST) 数据库中也有大量的微卫星位点可供筛选使用。

同时,由于近缘物种间的序列相似性高,从一个物种筛选设计的特异性引物有时也能用于研究其它近缘物种,从而大大提高了微卫星研究的效率二是自筛法。对于许多稀有物种,需要自己设计引物, 筛选位点。

基本步骤:

① 提取所要研究物种的基因组 DNA;

② 使用限制性内切酶,将基因组 DNA 切割成均匀的小片段;

③ 凝胶电泳,回收大小约 300〜500 bp 的片段;

④ 将回收片段克隆放大,使用标记探针进行杂交;

⑤ 筛选出含有重复序列的克隆,测序证实重复序列片段的存在;

⑥ 在重复序列片段两端区域设计引物对,进行 PCR 扩增,检验引物的有效性;

⑦ 小量样本进行预试验,挑选出重复性好、具多态性的微卫星位点。

用途

微卫星 PCR 在动物分类和进化中的常用应用领域如下:

1、遗传分析

徐玲玲等从资料和 GenBank 中选取了扩增效果好、等位基因多、均匀分布于小型的猪 18 条常染色体和 X 性染色体上的 100 个微卫星位点,合成引物,对封闭群小型的基因组进行 PCR 扩增及条件优化,从中筛选出 32 个分布于不同染色体且等位基因多的微卫星位点,应用于封闭群小型猪的遗传检测。李瑞生等选取大鼠 7 条染色体上的 9 个微卫星位点合成了 10 对引物,对国内北京和哈尔滨等 4 家单位提供的 6 个品系 (SHR、SHRSP、LEW、RCS、WKY 和 F344) 的 8 个近交系大鼠群体进行了 DNA 多态性分析的研究。

结果表明 9 个微卫星位点具有显著多态性;不同品系个体之间具有多态性;同一群体不同个体之间除 SHR(哈尔滨) 的 SMST 位点和 WKY(哈尔滨) 的 AGT 位点出现一定的差异外,其它均没有差异;不同地区同一品系的不同个体之间也存在一定的差异。该方法能有效地对近交系与杂交系、品系与品系、品系与亚系加以区分。为开展近交系大鼠遗传作图、基因定位和为实验动物的遗传背景监测提供可靠的信息,为大鼠遗传基因的研究提供了一个快捷简便、特异准确的方法。

2、亲缘关系的鉴定

Innocentiis 等利用 4 个高多态性的微卫星标记对意大利金头鯛 (Spaus auratus) 的两个养殖群体 BR1 的 39 尾个体和 BR2 的 59 尾个体进行了遗传分析,结果表明 BR2 群体,分别来自于 5 个野生群体,而且其所占的百分比相差不大 (10.3%〜27.6%);BR1 群体中的大部分 (43.6%) 个体来自于大西洋种群,剩下的来自于伊特鲁里亚海 (20.5%) 和撒丁运河 (20.5%)。

材料与仪器

器材:

PCR 仪、离心机、电泳仪

试剂:

① Taq DNA 聚合酶

② dNTP

③ 10 × PCR 缓冲液

④ DNA marker

⑤ 丙烯酰胺-亚甲基双丙烯酰胺 (19:1)

⑥ 尿素

⑦ 过硫酸铵

⑧ TEMED

⑨10% 乙酸

⑩ 硝酸银

⑪ 甲醛

⑫ 无水碳酸钠

⑬ 硫代硫酸钠

步骤

微卫星 PCR 在动物分类和进化中的应用的基本过程可分为如下几步:

1、基因组 DNA 的分离和定量

常规酚-氯仿法提取动物 DNA 样本,用紫外分光光度计测量 OD260/OD280 值确定纯度,将样本稀释至 50 ng/μl 作为 DNA 模板,4 ℃ 保存备用。

2、微卫星位点的选择

根据 DNA 数据库和已有文献,选取等位基因多、核心序列重复率高的微卫星位点,同时兼顾生化标记分析位点所在的染色体。

3、PCR 反应体系

反应体系为 25 μl, 其中含:

① 10 × 缓冲液 2.5 μl;

② 25 mmol/L MgCl2:分成 0.5 μl、1.0 uI、1.5 μl、2.0 uI、2.5 μl、3.0 μl 6 个梯度;

③ 2 mmol/L dNTP 1 μl;

④ 50 umol/L 上游引物 0.25 μl;

⑤ 50 μmol/L 下游引物 0.25 μl;

⑥ 样品 DNA 0.5 μl;

⑦ Taq 酶 1 U,最后用灭菌水补足。

4、PCR 反应条件

95 ℃ 预变性 5 min;95 ℃ 变性 1 min;退火设 50 ℃、53 ℃、56 ℃、59 ℃、62 ℃、65 ℃ 共 6 个梯度(由 PCR 仪一次设定)1 min;72 ℃ 延伸 1 min;设定 30 个循环;最后 72 ℃ 延长 5 min。

5、PCR 结果的分析

(1)琼脂糖凝胶电泳:将所有位点扩增产物经 2% 琼脂糖凝胶电泳后条带清晰,只有一条或两条,且条带大小位于 50~350 bp 范围内的位点作为被选位点,进而优化反应体系的 Mg2浓度和退火温度,再通过琼脂糖凝胶电泳结果初步判断位点的多态性,将等位基因数大于 3 个的位点保留,淘汰其它位点。

(2)聚丙烯酰胺凝胶电泳:对琼脂糖凝胶电泳初筛得到的 PCR 扩增产物,取 6 μl 于 8% 的聚丙烯酰胺凝胶,100 V 电泳 1.5 h, 银染,拍照。根据聚丙烯酰胺凝胶电泳图像结果,运用 BIOProfile Programe 初步统计分析,得到各个位点的等位基因数目。

(3)银染检测方法:凝胶于固定液中固定 20 min, 漂洗干净后进行硝酸银溶液染色 30 min,再漂洗后,于显色液中显色,条带清晰后用 10% 乙酸溶液终止显影,干燥后进行检测。

(4)结果判读:根据聚丙烯酰胺凝胶上 DNA 条带泳动距离进行结果判读,泳动距离最长的带设定英文字母 a,依次为 b、c、… 如果不同品系动物 DNA 条带泳动距离一致的,即表现为单态性,若有差异即为多态性。统计不同品系在研究位点上表现出多态性带的数目,扩增结果按 Lynch 法计算相似系数 F = 2Nab /(Na+Nb),其中 Nab 为两个品系相同谱带数;Na,Nb 为二者分别扩增带数,若无扩增带记为「—」。

注意事项

1、模板

DNA 模板的用量在 25~100 ng(25 μl 体系)均可获得较好的扩增条带,其中以 50ng 模板较适宜中。另外,小片段模板 DNA 的扩增效率通常优于大片段 DNA。因此,有建议认为,在 PCR 反应前采用机械剪切或用稀有限制内切酶消化基因组 DNA 更为有利。

2、Mg2浓度

Mg2+浓度是影响扩增效果的主要因素之一。对于微卫星 PCR 反应体系,MgCl2 的浓度通常以 1.5 mmol/L 左右为宜。但对于不同引物和模板,需要设计不同梯度进行优化,方可取得理想结果。

3、退火温度

退火温度对微卫星 PCR 反应的影响较大。在以寻找基因差异为目的的实验中,退火温度降低,效果较好。



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