荧光PCR法检测RNasin性能效果

实验目的：对RNasin性能效果进行检测及评估。 实验材料及设备：

模板RNA：大鼠肌肉组织RNA 引物：Rat β-acting：Forward CCCATCTATGAGGGTTACGC Reverse TTTAATGTCACGCACGATTTC RNase：50mg/ml（simgen） RNasin：40U/µl cDNA第一链合成试剂盒（simgen）、2×SYBR Green PCR mix（simgen） 设备：ABI 7000 荧光PCR仪、普通PCR仪、离心机及移液器 其他耗材：0.6ml离心管，八连排管，RNase-free吸头，一次性手套及防护用品和纸巾。 实验方法：利用逆转录反应将RNA逆转录成cDNA及SYBR Green荧光PCR方法对RNasin产品的性能效果进行检测评估。 实验方案：

设计思路：

1. 编号1-4为测试同一批RNasin的性能，1号与3号是测试相同RNA量和RNase量，加不加RNasin对cDNA合成的影响，即RNasin抑制RNase的活性效果。

2. 4号是表示在不添加RNase和RNasin时的空白对照。

3. 2号与3号是测试在相同RNA量和RNasin量的条件下，改变RNase的量，RNasin对不同量的RNase的抑制效果有什么变化。

实验步骤：

1.将模板RNA在冰上解冻；5×gDNA Buffer、RNasin、RNA(500ng/ul)、RNase、RNA-Free H2O、5×RT Buffer、RT-Enzyme mix、RT-Primer mix 、2×SYBR Green PCR Mix、引物、在室温（15-25℃）解冻，解冻后迅速置于冰上。使用前将每种溶液涡旋振荡混匀，简短离心以收集残留在管壁的液体。

注：RNase稀释需在抽风口或远离PCR操作室的实验室。 2. 按照表1的基因组DNA的去除体系配制混合液，彻底混匀。简短离心，并置于42℃，孵育30min，以保证RNase有充分时间去降解RNA。然后置于冰上放置。

表1 gDNA去除反应体系

注：

1. RNA的浓度是500ng/µl,RNA的浓度不能太低，且RNA需在RNase之前添加，否则可能被RNase降解完从而在荧光PCR上反映不出差异。 2. RNase的浓度分别为1ng/µl和10ng/µl，故在加入RNase时均加入2µl，保证不同的量相同体积，以减少误差，在加RNase的时候应尽量在无RNase的环境中添加，以免环境中RNase过多而导致RNA降解严重从而在荧光PCR上反映不出差异。

3. RNasin的浓度为40U/µl，添加RNasin应在加RNA之前添加。 后续cDNA合成步骤参考cDNA第一链合成试剂盒（simgen）说明书操作。所得cDNA稀释5倍，置于冰上备用。

荧光PCR步骤参考2×SYBR Green PCR Mix（simgen）说明书操作。将稀释好的cDNA模板按照5µl/管加入到荧光PCR反应体系混合液中，进行荧光PCR扩增，观察实验结果。

实验结果：

在加2ng RNase时，加不加RNasin对cDNA的合成是有明显影响的，即3号比1号的CT值要小6个CT，表示它们的起始cDNA浓度相差大概26倍,说明RNasin对RNase的影响是非常大的。从2号与3号对比，说明在相同量的RNasin下，当RNase的量增加到20ng时，80U RNasin的效果还不足将RNase完全抑制，说明一定量的RNasin只能对一定量的RNase有足够的抑制作用。