用于 LCM 的片子的 HE 染色实验
材料与仪器乙醇 曙红Y 梅耶苏木精 超纯水 二甲苯圆锥管 镊子 破璃染缸步骤一、材料1.缓冲液、溶液和试剂100%乙醇70%乙醇曙红Y(Sigma)梅耶苏木精(
材料与仪器
乙醇 曙红Y 梅耶苏木精 超纯水 二甲苯
圆锥管 镊子 破璃染缸
圆锥管 镊子 破璃染缸
步骤
一、材料
1.缓冲液、溶液和试剂
100%乙醇
70%乙醇
曙红Y(Sigma)
梅耶苏木精(Sigma)
DEPC处理的超纯水(BiotecxLaboratories,储存于4°C)
二甲苯(Sigma)
2.特殊设备
圆锥管,50ml
镊子
破璃染缸(用于二甲苯的盛放)
3.细胞和组织
来自方案1的片子
二、方法
染色应尽可能和LCM操作之间安排紧凑,尤其是H20和最后一步的乙酵一定要新鲜。要时刻记住降解的RNA数量与固定后样品在水相中的时间成正比(为了得到高质量的RNA,最好不要超过5mm)。在所有的步骤中都使用DEPC处理的水。最后一步的乙醇和二甲苯可能吸潮,如果湿度较高,推荐将片子在100%乙酵中过3次,第二次放于二甲苯中时洗2min。如果湿度低,省略第三次的纯乙醇,并缩短二甲苯的时间到30s。在每进行下一步之前都要擦掉片子边缘和背部的水。有时片子排拒溶液,必要时重复。用镊子夹住片子。
1.准备染色液(图11-3)。
2.浸于70%的乙醇中30s。
3.纯水洗(不要用PBS代替水,如果选用了PBS就会导致组织与LCM膜间黏着欠佳),在染缸中上下移动切片,5~30s。
4.梅耶苏木精(Mayer’shematoxylin)30s
5.纯水洗(不要用PBS代替水,如果选用了PBS就会导致组织与LCM胰间黏着欠佳),在染缸中上下移动切片,5~30s。
6.70%的乙醇洗30s。
7.100%的乙藓洗30s。
8.曙红Y中30s。
9.100%乙醇洗30s,重复2~3次。
10.二甲苯洗0.5~2min,2次。此时用于LCM样品准备完毕。
1.缓冲液、溶液和试剂
100%乙醇
70%乙醇
曙红Y(Sigma)
梅耶苏木精(Sigma)
DEPC处理的超纯水(BiotecxLaboratories,储存于4°C)
二甲苯(Sigma)
2.特殊设备
圆锥管,50ml
镊子
破璃染缸(用于二甲苯的盛放)
3.细胞和组织
来自方案1的片子
二、方法
染色应尽可能和LCM操作之间安排紧凑,尤其是H20和最后一步的乙酵一定要新鲜。要时刻记住降解的RNA数量与固定后样品在水相中的时间成正比(为了得到高质量的RNA,最好不要超过5mm)。在所有的步骤中都使用DEPC处理的水。最后一步的乙醇和二甲苯可能吸潮,如果湿度较高,推荐将片子在100%乙酵中过3次,第二次放于二甲苯中时洗2min。如果湿度低,省略第三次的纯乙醇,并缩短二甲苯的时间到30s。在每进行下一步之前都要擦掉片子边缘和背部的水。有时片子排拒溶液,必要时重复。用镊子夹住片子。
1.准备染色液(图11-3)。
2.浸于70%的乙醇中30s。
3.纯水洗(不要用PBS代替水,如果选用了PBS就会导致组织与LCM膜间黏着欠佳),在染缸中上下移动切片,5~30s。
4.梅耶苏木精(Mayer’shematoxylin)30s
5.纯水洗(不要用PBS代替水,如果选用了PBS就会导致组织与LCM胰间黏着欠佳),在染缸中上下移动切片,5~30s。
6.70%的乙醇洗30s。
7.100%的乙藓洗30s。
8.曙红Y中30s。
9.100%乙醇洗30s,重复2~3次。
10.二甲苯洗0.5~2min,2次。此时用于LCM样品准备完毕。
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