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细胞技术

5 大细胞染色实验如何选与用?

2018-05-17 细胞技术 加入收藏
细胞染色实验便于我们更好地观察细胞,本文盘点 5 个常用的染色技术,丰富你的实验选择。一、Hoechst 染色hoechst可以穿过活细胞膜与细胞核结合有 hoechest33342 和 hoechst33258 两种(主要为凋亡活细胞)在紫外光下将核染为蓝色。Hoechst 染细胞核会影响共聚焦显微镜对该样本其他荧光的观察效果。hoechsthoechsts33258,hoechst33342

细胞染色实验便于我们更好地观察细胞,本文盘点 5 个常用的染色技术,丰富你的实验选择。

一、Hoechst 染色

hoechst可以穿过活细胞膜与细胞核结合有 hoechest33342 和 hoechst33258 两种(主要为凋亡活细胞)在紫外光下将核染为蓝色。Hoechst 染细胞核会影响共聚焦显微镜对该样本其他荧光的观察效果。hoechsthoechsts33258,hoechst33342 二者区别不大,但是 hoechst33342 对细胞的毒性作用更小一些,所以一般来说 hoechsts33258 用于细胞固定后再染色,而 hoechst33342 则可以对活细胞直接进行染色!

二、PI(PropidiumIodide碘化丙啶)染色

是一种可对 DNA 染色的细胞核染色(PropidiumIodide,PI)是一种核酸染料(红试剂,常用于细胞凋亡检测。碘化丙啶色),它不能透过完整的细胞膜,但凋亡中晚期的细胞和坏死细胞由于细胞膜通透性的增加,PI能够透过细胞膜而使细胞核染红。

用 PI 单一染色观测培养细胞,只能表示细胞的坏死情况,而不是凋亡(当然晚期凋亡 PI 亦可着色)。但是如果您只是想知道细胞的死亡情况,而不是仔细区分坏死或凋亡,那么 PI 单一染色也可以。但是如果您一定要认定细胞的凋亡,那么 PI 单一染色显然不够!

三、annexin-v 染色

细胞凋亡早期,细胞膜标志发生改变。其中,磷脂酰丝氨酸(Annexin-V,PS)外翻,Annexin-V 在 Ca2+ 存在的条件下与其高亲和力特异性结合。这样,Annexin-v 染色阳性,表示细胞处于早期凋亡状态。Annexin-V 结合不同的荧光抗体,就可以利用流式细胞仪、荧光显微镜以及共聚焦激光扫描显微镜检测细胞凋亡的发生。AnnexinV 用 FITC 标记发绿色荧光;如果用 PE 标记就发红色荧光

四、JC-1 染色

JC-1 是一种阳离子染料,可以在线粒体内聚集,低浓度时主要以单体(monomer)存在,发射光以绿光(~525nm)为主;而在高浓度时则可以形成多聚体(aggregation),发射光以红光(-590nm)为主。线粒体本身存在一定的极性(polarization),其外膜为负极,内膜为正极。

电位差由Ca2+、Na+ 和 H+ 流调控。当线粒体状态良好时对 JC-l 摄取量少,因而在线粒体内主要以单体的形式存在绿光强度/红光强度的比值较高。

在线粒体发生去极化(depolarization)时,线粒内 JC-l 的浓度较高,多以多聚体的形式存在,绿光强度/红光强度的比值降低。 JC-1 染色的绿光强度/红光强度仅取决于线粒体的膜电势(membranepotential),而与线粒体的形态、体积和密度都无关,因而能更好地反映线粒体的功能状态。由于凋亡发生的早期存在线粒体的去极性,因此,JC-1 染色被用于检测凋亡的早期发生。其实验方法如下。

JC-l 染色非常简单。首先可将成品 JC-1 以 DMSO 配成储存液(1~5 mg/ml),储存于 -20℃,用时以培养液稀释至 10 ug/ml 终浓度。对贴壁细胞可以直接弃去培养液,漂洗细胞后直接加入染色液,10~30 min 后在荧光显微镜下或者激光共聚焦下观察。线粒体状态好时细胞以绿色为主,当红光信号增强时,红绿相叠,以橙色为主。该染色运用于悬浮细胞时还可以通过流式细胞仪进行检测,收集红/绿信号强度,计算其强度比。

五、钙黄绿素-AM(Calcein-AM)

Calcein-AM 本身并不是荧光分子,但通过活细胞内的酯酶作用,Calcein-AM 能脱去 AM 基,产生的 Calcein 能发出强绿色荧光(激发:490 nm,发射:515 nm)。因此 Calcein-AM 仅对活细胞染。


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